有很多种格式来记录mapping的结果，大多数都收录在UCSC的帮助文档中。在mapping之后，如何对mapping的结果进行评估呢？ 最简单的，就是通过samtools来评估mapping质量了。
samtools idxstats aln.sorted.bam
注意，这一步之前需要经过sort和index。结果会显示：
chr1 195471971 6112404 0 chr10 130694993 3933316 0 chr11 122082543 6550325 0 chr12 120129022 3876527 0 chr13 120421639 5511799 0 chr14 124902244 3949332 0 chr15 104043685 3872649 0 chr16 98207768 6038669 0 chr17 94987271 13544866 0 chr18 90702639 4739331 0 chr19 61431566 2706779 0 chr2 182113224 8517357 0 chr3 160039680 5647950 0 chr4 156508116 4880584 0 chr5 151834684 6134814 0 chr6 149736546 7955095 0 chr7 145441459 5463859 0 chr8 129401213 5216734 0 chr9 124595110 7122219 0 chrM 16299 1091260 0 chrX 171031299 3248378 0 chrY 91744698 259078 0 * 0 0 0
其中第一列是染色体名称，第二列是序列长度，第三列是mapped reads数，第四列是unmapped reads数。 如果是RNAseq，我们可以使用broad institute的RNA-SeQC来得到更加完整的报告。下载到文件之后，也许需要安装BWA来获取更精准的结果，但是如果不安装的话，也可以进行分 析。一般来说，这一步不需要特别精准的结果，所以我很少使用BWA选项。下载的文件如果是.zip结尾的，直接把它改写成.jar就可以运行了。 在它的主页上下载所需要的Example RNA-seq Data。下载结束之后，该解压的解压缩。接下来运行：
samtools index example/ThousandReads.bam samtools faidx example/Homo_sapiens_assembly19.fasta java -Xmx2048m -jar RNA-SeQC_v1.1.7.jar -n 1000 -s "TestId|example/ThousandReads.bam|TestDesc" -t example/gencode.v7.annotation_goodContig.gtf -r example/Homo_sapiens_assembly19.fasta -o ./testReport/ -start gc -gc example/gencode.v7.gc.txt
以上的参数只有一个与其说明文档不一样的地方就是使用了-Xmx2048m来指定java虚拟机的内存大小为2G。如果遇到java.lang.OutOfMemoryError，还可以指定得再大些。
当然如果是自己的文件的话，还需要多两步：
1.BAM，reference及GTF文件的基因组名称必须一致。
2.需要使用picard工具包中的CreateSequenceDictionary来构建一个dictionary文件。